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Avantages pour la santé
La racine de bardane est souvent consommée, mais on peut aussi la sécher et l'infuser en tisane. C'est une excellente source d'inuline, unprébiotiqueDes fibres qui facilitent la digestion et améliorent la santé intestinale. De plus, cette racine contient des flavonoïdes (nutriments végétaux).composés phytochimiqueset des antioxydants connus pour leurs bienfaits pour la santé.
De plus, la racine de bardane peut offrir d’autres avantages tels que :
Réduire l'inflammation chronique La racine de bardane contient un certain nombre d'antioxydants, tels que la quercétine, les acides phénoliques et la lutéoline, qui peuvent aider à protéger vos cellules contreradicaux libresCes antioxydants aident à réduire l’inflammation dans tout le corps.
Risques pour la santé
La racine de bardane est considérée comme sûre à consommer ou à boire en tisane. Cependant, cette plante ressemble beaucoup à la belladone, qui est toxique. Il est recommandé de n'acheter la racine de bardane qu'auprès de vendeurs de confiance et d'éviter de la cueillir soi-même. De plus, les informations sur ses effets chez les enfants et les femmes enceintes sont rares. Consultez votre médecin avant d'utiliser la racine de bardane chez les enfants ou si vous êtes enceinte.
Voici quelques autres risques possibles pour la santé à prendre en compte si vous utilisez de la racine de bardane :
Déshydratation accrue
La racine de bardane agit comme un diurétique naturel, ce qui peut entraîner une déshydratation. Si vous prenez des diurétiques ou d'autres diurétiques, évitez la racine de bardane. Si vous prenez ces médicaments, il est important de connaître les autres médicaments, plantes et ingrédients susceptibles d'entraîner une déshydratation.
Réaction allergique
Si vous êtes sensible ou avez des antécédents de réactions allergiques aux marguerites, à l’ambroisie ou aux chrysanthèmes, vous courez un risque accru de réaction allergique à la racine de bardane.
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Des études animales et in vitro ont examiné les effets antifongiques, anti-inflammatoires et cardiovasculaires potentiels du sassafras et de ses composants. Cependant, les essais cliniques manquent et le sassafras n'est pas considéré comme sûr. Le safrole, principal composant de l'écorce et de l'huile de racine de sassafras, a été interdit par la Food and Drug Administration (FDA) américaine, y compris comme arôme ou parfum, et ne doit être utilisé ni en usage interne ni en usage externe, car il est potentiellement cancérigène. Le safrole a été utilisé dans la production illégale de 3,4-méthylènedioxyméthamphétamine (MDMA), également connue sous les noms de rue « ecstasy » ou « Molly », et la vente de safrole et d'huile de sassafras est surveillée par la Drug Enforcement Administration (DEA) américaine.
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La pharmacopée chinoise (édition 2020) exige que l'extrait méthanolique de YCH ne soit pas inférieur à 20,0 % [2], sans autre indicateur d'évaluation de la qualité spécifié. Les résultats de cette étude montrent que les teneurs des extraits méthanoliques des échantillons sauvages et cultivés étaient conformes à la norme de la pharmacopée, et qu'il n'y avait pas de différence significative entre eux. Par conséquent, il n'y avait pas de différence de qualité apparente entre les échantillons sauvages et cultivés, selon cet indice. Cependant, les teneurs en stérols totaux et en flavonoïdes totaux des échantillons sauvages étaient significativement plus élevées que celles des échantillons cultivés. Une analyse métabolomique plus poussée a révélé une abondante diversité de métabolites entre les échantillons sauvages et cultivés. De plus, 97 métabolites significativement différents ont été éliminés, qui sont répertoriés dans leTableau supplémentaire S2Parmi ces métabolites significativement différents figurent le β-sitostérol (ID : M397T42) et les dérivés de la quercétine (M447T204_2), dont les principes actifs ont été rapportés. Des constituants non rapportés auparavant, tels que la trigonelline (M138T291_2), la bétaïne (M118T277_2), la fustine (M269T36), la roténone (M241T189), l'arctiine (M557T165) et l'acide loganique (M399T284_2), ont également été inclus parmi les métabolites différentiels. Ces composants jouent divers rôles dans les domaines de l'antioxydation, de l'anti-inflammatoire, de la lutte contre les radicaux libres, de l'anticancéreux et du traitement de l'athérosclérose. Ils pourraient donc constituer de nouveaux principes actifs potentiels de l'YCH. La teneur en principes actifs détermine l'efficacité et la qualité des substances médicinales.7]. En résumé, l'extrait au méthanol, seul indice d'évaluation de la qualité du YCH, présente certaines limites, et des marqueurs de qualité plus spécifiques doivent être explorés plus avant. Des différences significatives ont été observées dans les stérols totaux, les flavonoïdes totaux et les teneurs en de nombreux autres métabolites différentiels entre le YCH sauvage et le YCH cultivé ; il existe donc potentiellement des différences de qualité entre eux. Parallèlement, les ingrédients actifs potentiels nouvellement découverts dans le YCH pourraient constituer une valeur de référence importante pour l'étude des bases fonctionnelles du YCH et le développement ultérieur des ressources en YCH.
L'importance des matières médicinales authentiques est reconnue depuis longtemps dans la région d'origine spécifique pour la production de médicaments à base de plantes chinoises d'excellente qualité [8]. La qualité est un attribut essentiel des matières médicinales authentiques, et l'habitat est un facteur important affectant la qualité de ces matières. Depuis que le YCH a commencé à être utilisé en médecine, il a longtemps été dominé par le YCH sauvage. Suite à l'introduction et à la domestication réussies du YCH au Ningxia dans les années 1980, la source des matières médicinales de Yinchaihu est progressivement passée du YCH sauvage au YCH cultivé. Selon une précédente enquête sur les sources de YCH [9] et l'enquête de terrain de notre groupe de recherche ont révélé des différences significatives dans les aires de répartition des matières médicinales cultivées et sauvages. Le YCH sauvage est principalement réparti dans la région autonome Hui du Ningxia, province du Shaanxi, adjacente à la zone aride de la Mongolie intérieure et au centre du Ningxia. La steppe désertique de ces régions constitue notamment l'habitat le plus propice à la croissance du YCH. En revanche, le YCH cultivé est principalement réparti au sud de son aire de répartition sauvage, notamment dans le comté de Tongxin (Cultivé I) et ses environs, devenu la plus grande base de culture et de production de Chine, et dans le comté de Pengyang (Cultivé II), situé plus au sud et autre zone de production du YCH cultivé. De plus, les habitats de ces deux zones cultivées ne sont pas des steppes désertiques. Par conséquent, outre le mode de production, il existe également des différences significatives entre l'habitat du YCH sauvage et celui du YCH cultivé. L'habitat est un facteur important affectant la qualité des matières médicinales à base de plantes. Différents habitats affecteront la formation et l'accumulation de métabolites secondaires dans les plantes, affectant ainsi la qualité des médicaments [10,11]. Par conséquent, les différences significatives dans les teneurs en flavonoïdes totaux et en stérols totaux et dans l’expression des 53 métabolites que nous avons trouvées dans cette étude pourraient être le résultat de différences de gestion des champs et d’habitat.L'un des principaux effets de l'environnement sur la qualité des substances médicinales est le stress qu'il exerce sur les plantes sources. Un stress environnemental modéré tend à stimuler l'accumulation de métabolites secondaires.12,13]. L'hypothèse de l'équilibre croissance/différenciation stipule que, lorsque les nutriments sont en quantité suffisante, les plantes poussent principalement, tandis que lorsque les nutriments sont déficients, les plantes se différencient principalement et produisent davantage de métabolites secondaires [14Français ]. Le stress hydrique causé par le manque d'eau est le principal stress environnemental auquel sont confrontées les plantes dans les zones arides. Dans cette étude, l'état hydrique du YCH cultivé est plus abondant, avec des niveaux de précipitations annuelles significativement plus élevés que ceux du YCH sauvage (l'approvisionnement en eau du Cultivé I était environ 2 fois supérieur à celui du Sauvage ; le Cultivé II était environ 3,5 fois supérieur à celui du Sauvage). De plus, le sol dans l'environnement sauvage est un sol sableux, mais le sol des terres agricoles est un sol argileux. Comparé à l'argile, le sol sableux a une faible capacité de rétention d'eau et est plus susceptible d'aggraver le stress hydrique. Dans le même temps, le processus de culture était souvent accompagné d'arrosage, de sorte que le degré de stress hydrique était faible. Le YCH sauvage pousse dans des habitats naturels arides difficiles et peut donc subir un stress hydrique plus grave.L'osmorégulation est un mécanisme physiologique important par lequel les plantes font face au stress hydrique, et les alcaloïdes sont d'importants régulateurs osmotiques chez les plantes supérieures [15]. Les bétaïnes sont des composés d'ammonium quaternaire alcaloïdes hydrosolubles et peuvent agir comme osmoprotecteurs. Le stress hydrique peut réduire le potentiel osmotique des cellules, tandis que les osmoprotecteurs préservent et maintiennent la structure et l'intégrité des macromolécules biologiques, et atténuent efficacement les dommages causés aux plantes par le stress hydrique.16]. Par exemple, en cas de stress hydrique, la teneur en bétaïne de la betterave sucrière et du Lycium barbarum a augmenté de manière significative [17,18]. La trigonelline est un régulateur de la croissance cellulaire. En cas de stress hydrique, elle peut prolonger le cycle cellulaire, inhiber la croissance cellulaire et entraîner une diminution du volume cellulaire. L'augmentation relative de la concentration en soluté dans la cellule permet à la plante d'assurer une régulation osmotique et d'améliorer sa résistance au stress hydrique.19]. JIA X [20] ont constaté qu'avec une augmentation du stress hydrique, l'Astragalus membranaceus (une plante utilisée en médecine traditionnelle chinoise) produisait davantage de trigonelline, qui régule le potentiel osmotique et améliore la résistance au stress hydrique. Il a également été démontré que les flavonoïdes jouent un rôle important dans la résistance des plantes au stress hydrique [21,22]. Un grand nombre d'études ont confirmé qu'un stress hydrique modéré était propice à l'accumulation de flavonoïdes. Lang Duo-Yong et al. [23] ont comparé les effets du stress hydrique sur l'YCH en contrôlant la capacité de rétention d'eau au champ. Il a été constaté que le stress hydrique inhibait la croissance des racines dans une certaine mesure, mais en cas de stress hydrique modéré à sévère (40 % de la capacité de rétention d'eau au champ), la teneur totale en flavonoïdes de l'YCH augmentait. Parallèlement, en cas de stress hydrique, les phytostérols peuvent réguler la fluidité et la perméabilité des membranes cellulaires, inhiber la perte d'eau et améliorer la résistance au stress [24,25]. Par conséquent, l’accumulation accrue de flavonoïdes totaux, de stérols totaux, de bétaïne, de trigonelline et d’autres métabolites secondaires dans le YCH sauvage pourrait être liée à un stress hydrique de haute intensité.Dans cette étude, une analyse d'enrichissement de la voie KEGG a été réalisée sur les métabolites significativement différents entre les YCH sauvages et cultivés. Les métabolites enrichis incluaient ceux impliqués dans les voies du métabolisme de l'ascorbate et de l'aldarate, la biosynthèse des aminoacyl-ARNt, le métabolisme de l'histidine et le métabolisme de la bêta-alanine. Ces voies métaboliques sont étroitement liées aux mécanismes de résistance au stress des plantes. Parmi elles, le métabolisme de l'ascorbate joue un rôle important dans la production d'antioxydants, le métabolisme du carbone et de l'azote, la résistance au stress et d'autres fonctions physiologiques des plantes.26]; la biosynthèse des aminoacyl-ARNt est une voie importante pour la formation des protéines [27,28], impliquée dans la synthèse de protéines résistantes au stress. Les voies de l'histidine et de la β-alanine peuvent toutes deux améliorer la tolérance des plantes au stress environnemental [29,30]. Cela indique en outre que les différences de métabolites entre le YCH sauvage et cultivé étaient étroitement liées aux processus de résistance au stress.Le sol est la base matérielle de la croissance et du développement des plantes médicinales. L'azote (N), le phosphore (P) et le potassium (K) présents dans le sol sont des éléments nutritifs importants pour la croissance et le développement des plantes. La matière organique du sol contient également N, P, K, Zn, Ca, Mg et d'autres macroéléments et oligo-éléments nécessaires aux plantes médicinales. Un excès ou une carence en nutriments, ou un déséquilibre des ratios nutritionnels, affecteront la croissance, le développement et la qualité des substances médicinales. Chaque plante a des besoins nutritionnels différents.31,32,33]. Par exemple, un faible stress azoté a favorisé la synthèse d'alcaloïdes chez Isatis indigotica et a été bénéfique à l'accumulation de flavonoïdes chez des plantes telles que Tetrastigma hemsleyanum, Crataegus pinnatifida Bunge et Dichondra repens Forst. En revanche, un excès d'azote a inhibé l'accumulation de flavonoïdes chez des espèces telles qu'Erigeron breviscapus, Abrus cantoniensis et Ginkgo biloba, et a affecté la qualité des substances médicinales [34]. L'application d'engrais phosphatés a été efficace pour augmenter la teneur en acide glycyrrhizique et en dihydroacétone de la réglisse de l'Oural [35]. Lorsque la quantité appliquée dépassait 0,12 kg·m−2, la teneur totale en flavonoïdes de Tussilago farfara diminuait [36]. L'application d'un engrais phosphaté a eu un effet négatif sur la teneur en polysaccharides du rhizoma polygonati de la médecine traditionnelle chinoise [37], mais un engrais K était efficace pour augmenter sa teneur en saponines [38]. L'application de 450 kg·hm−2 d'engrais K s'est avérée la meilleure solution pour la croissance et l'accumulation de saponine de Panax notoginseng âgé de deux ans [39]. Sous le rapport N:P:K = 2:2:1, les quantités totales d'extrait hydrothermal, d'harpagide et d'harpagoside étaient les plus élevées [40]. Le rapport élevé de N, P et K a favorisé la croissance de Pogostemon cablin et augmenté la teneur en huile volatile. Un faible rapport de N, P et K a augmenté la teneur en principaux composants actifs de l'huile de feuilles de tige de Pogostemon cablin.41]. L'YCH est une plante tolérante aux sols arides et pourrait avoir des besoins spécifiques en nutriments tels que N, P et K. Dans cette étude, comparé à l'YCH cultivé, le sol des plantes sauvages d'YCH était relativement aride : les teneurs en matière organique, N total, P total et K total étaient respectivement d'environ 1/10, 1/2, 1/3 et 1/3 de celles des plantes cultivées. Par conséquent, les différences dans les nutriments du sol pourraient être une autre raison des différences entre les métabolites détectés dans l'YCH cultivé et sauvage. Weibao Ma et al. [42] ont constaté que l'application d'une certaine quantité d'engrais azoté et phosphaté améliorait significativement le rendement et la qualité des semences. Cependant, l'effet des éléments nutritifs sur la qualité du YCH n'est pas clair, et les mesures de fertilisation visant à améliorer la qualité des matières médicinales nécessitent des études plus approfondies.Les plantes médicinales chinoises ont les caractéristiques suivantes : « Les habitats favorables favorisent le rendement et les habitats défavorables améliorent la qualité » [43]. Au cours du passage progressif de l'YCH sauvage à l'YCH cultivé, l'habitat des plantes est passé de la steppe désertique aride et stérile à des terres agricoles fertiles et abondantes en eau. L'habitat de l'YCH cultivé est supérieur et le rendement est plus élevé, ce qui contribue à répondre à la demande du marché. Cependant, cet habitat supérieur a entraîné des modifications significatives des métabolites de l'YCH ; des recherches supplémentaires seront nécessaires pour déterminer si cela contribue à améliorer la qualité de l'YCH et comment parvenir à une production de haute qualité grâce à des mesures culturales fondées sur la science.La culture d'habitat simulé est une méthode de simulation de l'habitat et des conditions environnementales des plantes médicinales sauvages, basée sur la connaissance de l'adaptation à long terme des plantes à des stress environnementaux spécifiques [43]. En simulant divers facteurs environnementaux qui affectent les plantes sauvages, en particulier l'habitat d'origine des plantes utilisées comme sources de matériaux médicinaux authentiques, l'approche utilise une conception scientifique et une intervention humaine innovante pour équilibrer la croissance et le métabolisme secondaire des plantes médicinales chinoises [43]. Ces méthodes visent à optimiser le développement de substances médicinales de haute qualité. La culture en milieu naturel simulé devrait permettre une production efficace de YCH de haute qualité, même lorsque les bases pharmacodynamiques, les marqueurs de qualité et les mécanismes de réponse aux facteurs environnementaux restent flous. Par conséquent, nous suggérons que la conception scientifique et les mesures de gestion sur le terrain pour la culture et la production de YCH soient prises en tenant compte des caractéristiques environnementales de l'YCH sauvage, telles que les sols arides, stériles et sableux. Parallèlement, nous espérons que les chercheurs approfondiront leurs recherches sur les bases fonctionnelles et les marqueurs de qualité de l'YCH. Ces études pourront fournir des critères d'évaluation plus efficaces pour l'YCH et favoriser une production de haute qualité et le développement durable de la filière. -
Huile essentielle de Fructus Amomi aux herbes, diffuseurs de massage naturels, 1 kg en vrac, huile essentielle d'Amomum villosum
La famille des Zingibéracées suscite un intérêt croissant dans la recherche allélopathique en raison de la richesse de ses huiles volatiles et de l'aromaticité de ses espèces. Des recherches antérieures avaient montré que les composés chimiques du Curcuma zedoaria (zédoaire) [40], Alpinia zerumbet (Pers.) BLBurtt & RMSm. [41] et Zingiber officinale Rosc. [42] de la famille du gingembre ont des effets allélopathiques sur la germination des graines et la croissance des plantules de maïs, de laitue et de tomate. Notre étude est la première à rapporter l'activité allélopathique des composés volatils des tiges, des feuilles et des jeunes fruits d'A. villosum (un membre de la famille des Zingiberaceae). Le rendement en huile des tiges, des feuilles et des jeunes fruits était respectivement de 0,15 %, 0,40 % et 0,50 %, ce qui indique que les fruits produisent une plus grande quantité d'huiles volatiles que les tiges et les feuilles. Les principaux composants des huiles volatiles des tiges étaient le β-pinène, le β-phellandrène et l'α-pinène, dont le profil était similaire à celui des principaux composés chimiques de l'huile des feuilles, le β-pinène et l'α-pinène (hydrocarbures monoterpéniques). En revanche, l'huile des jeunes fruits était riche en acétate de bornyle et en camphre (monoterpènes oxygénés). Ces résultats ont été corroborés par les conclusions de Do N Dai [30,32] et Hui Ao [31] qui avait identifié les huiles de différents organes d'A. villosum.
Plusieurs études ont porté sur l'activité inhibitrice de ces principaux composés sur la croissance végétale d'autres espèces. Shalinder Kaur a constaté que l'α-pinène d'eucalyptus inhibait fortement la longueur des racines et la hauteur des pousses d'Amaranthus viridis L. à une concentration de 1,0 μL [43], et une autre étude a montré que l'α-pinène inhibait la croissance précoce des racines et provoquait des dommages oxydatifs dans les tissus racinaires par une génération accrue d'espèces réactives de l'oxygène [44]. Certains rapports ont avancé que le β-pinène inhibait la germination et la croissance des plantules des mauvaises herbes testées de manière dose-dépendante en perturbant l'intégrité de la membrane [45], modifiant la biochimie végétale et améliorant les activités des peroxydases et des polyphénols oxydases [46]. Le β-phellandrène a montré une inhibition maximale de la germination et de la croissance de Vigna unguiculata (L.) Walp à une concentration de 600 ppm [47], alors qu'à une concentration de 250 mg/m3, le camphre a supprimé la croissance des radicules et des pousses de Lepidium sativum L. [48]. Cependant, les recherches rapportant l'effet allélopathique de l'acétate de bornyle sont rares. Dans notre étude, les effets allélopathiques du β-pinène, de l'acétate de bornyle et du camphre sur la longueur des racines étaient plus faibles que pour les huiles volatiles à l'exception de l'α-pinène, tandis que l'huile de feuille, riche en α-pinène, était également plus phytotoxique que les huiles volatiles correspondantes des tiges et des fruits d'A. villosum, ces deux résultats indiquant que l'α-pinène pourrait être le produit chimique important pour l'allélopathie de cette espèce. Dans le même temps, les résultats ont également suggéré que certains composés présents en faible quantité dans l'huile de fruit pourraient contribuer à la production de l'effet phytotoxique, une découverte qui nécessite des recherches plus approfondies à l'avenir.Dans des conditions normales, l'effet allélopathique des substances allélochimiques est spécifique à chaque espèce. Jiang et al. ont constaté que l'huile essentielle produite par Artemisia sieversiana exerçait un effet plus puissant sur Amaranthus retroflexus L. que sur Medicago sativa L., Poa annua L. et Pennisetum alopecuroides (L.) Spreng. [49]. Dans une autre étude, l'huile volatile de Lavandula angustifolia Mill. a produit différents degrés d'effets phytotoxiques sur différentes espèces végétales. Lolium multiflorum Lam. était l'espèce acceptrice la plus sensible, la croissance de l'hypocotyle et de la radicule étant inhibée de 87,8 % et 76,7 %, respectivement, à une dose de 1 μL/mL d'huiles, mais la croissance de l'hypocotyle des plantules de concombre a été à peine affectée [20]. Nos résultats ont également montré qu’il y avait une différence de sensibilité aux composés volatils d’A. villosum entre L. sativa et L. perenne.Les composés volatils et les huiles essentielles d'une même espèce peuvent varier quantitativement et/ou qualitativement en fonction des conditions de croissance, des parties de la plante et des méthodes de détection. Par exemple, un rapport a démontré que le pyranoïde (10,3 %) et le β-caryophyllène (6,6 %) étaient les principaux composés volatils émis par les feuilles de Sambucus nigra, tandis que le benzaldéhyde (17,8 %), l'α-bulnésène (16,6 %) et le tétracosane (11,5 %) étaient abondants dans les huiles extraites des feuilles [50]. Dans notre étude, les composés volatils libérés par les matières végétales fraîches ont eu des effets allélopathiques plus marqués sur les plantes testées que les huiles volatiles extraites, les différences de réponse étant étroitement liées aux différences entre les composés allélochimiques présents dans les deux préparations. Les différences exactes entre les composés volatils et les huiles devront être étudiées plus en détail lors d'expériences ultérieures.Les différences dans la diversité microbienne et la structure de la communauté microbienne dans les échantillons de sol auxquels des huiles volatiles avaient été ajoutées étaient liées à la compétition entre les micro-organismes ainsi qu'à d'éventuels effets toxiques et à la durée de présence des huiles volatiles dans le sol. Vokou et Liotiri [51] ont constaté que l'application de quatre huiles essentielles (0,1 ml) sur un sol cultivé (150 g) activait la respiration des échantillons de sol. Même si la composition chimique des huiles différait, cela suggère que les huiles végétales sont utilisées comme source de carbone et d'énergie par les micro-organismes présents dans le sol. Les données issues de la présente étude ont confirmé que les huiles de la plante entière d'A. villosum ont contribué à l'augmentation notable du nombre d'espèces fongiques du sol dès le 14e jour suivant l'ajout d'huile, ce qui indique que l'huile pourrait fournir une source de carbone à davantage de champignons du sol. Une autre étude a rapporté un résultat : les micro-organismes du sol ont retrouvé leur fonction et leur biomasse initiales après une période temporaire de variation induite par l'ajout d'huile de Thymbra capitata L. (Cav), mais la dose maximale d'huile (0,93 µL d'huile par gramme de sol) n'a pas permis aux micro-organismes du sol de retrouver leur fonctionnalité initiale.52]. Dans l'étude actuelle, basée sur l'analyse microbiologique du sol après avoir été traité avec différents jours et concentrations, nous avons supposé que la communauté bactérienne du sol se rétablirait après plus de jours. En revanche, le microbiote fongique ne peut pas revenir à son état initial. Les résultats suivants confirment cette hypothèse : l'effet distinct d'une forte concentration d'huile sur la composition du microbiome fongique du sol a été révélé par l'analyse des coordonnées principales (PCoA), et les présentations de cartes thermiques ont confirmé à nouveau que la composition de la communauté fongique du sol traité avec 3,0 mg/mL d'huile (soit 0,375 mg d'huile par gramme de sol) au niveau du genre différait considérablement des autres traitements. Actuellement, les recherches sur les effets de l'ajout d'hydrocarbures monoterpéniques ou de monoterpènes oxygénés sur la diversité microbienne du sol et la structure de la communauté sont encore rares. Quelques études ont rapporté que l'α-pinène augmentait l'activité microbienne du sol et l'abondance relative des Methylophilaceae (un groupe de méthylotrophes, Proteobacteria) dans des conditions de faible teneur en humidité, jouant un rôle important en tant que source de carbone dans les sols plus secs [53]. De même, l'huile volatile de la plante entière d'A. villosum, contenant 15,03 % d'α-pinène (Tableau supplémentaire S1), a manifestement augmenté l'abondance relative des protéobactéries à 1,5 mg/mL et 3,0 mg/mL, ce qui suggère que l'α-pinène agit probablement comme l'une des sources de carbone pour les micro-organismes du sol.Les composés volatils produits par différents organes d'A. villosum ont eu des effets allélopathiques à des degrés divers sur L. sativa et L. perenne, étroitement liés aux constituants chimiques contenus dans les parties de la plante d'A. villosum. Bien que la composition chimique de l'huile volatile ait été confirmée, les composés volatils libérés par A. villosum à température ambiante sont inconnus, ce qui nécessite des recherches plus approfondies. De plus, l'effet synergétique entre différents composés allélochimiques mérite également d'être pris en compte. Concernant les micro-organismes du sol, pour étudier de manière exhaustive l'effet de l'huile volatile sur les micro-organismes du sol, des recherches plus approfondies sont nécessaires : prolonger la durée de traitement de l'huile volatile et identifier les variations de composition chimique de l'huile volatile dans le sol selon les jours. -
Huile essentielle pure d'Artemisia capillaris pour la fabrication de bougies et de savons, diffuseur en gros, nouvelle huile essentielle pour diffuseurs à roseaux
Conception d'un modèle de rongeur
Les animaux ont été répartis aléatoirement en cinq groupes de quinze souris chacun. Les souris du groupe témoin et du groupe modèle ont été gavées avechuile de sésamePendant 6 jours. Les souris du groupe témoin positif ont été gavées avec des comprimés de bifendate (BT, 10 mg/kg) pendant 6 jours. Les groupes expérimentaux ont été traités avec 100 mg/kg et 50 mg/kg d'huile essentielle d'ail dissoute dans de l'huile de sésame pendant 6 jours. Le 6e jour, le groupe témoin a été traité avec de l'huile de sésame, et tous les autres groupes ont reçu une dose unique de CCl4 à 0,2 % dans de l'huile de sésame (10 ml/kg) parinjection intrapéritonéaleLes souris ont ensuite été mises à jeun sans eau et des échantillons de sang ont été prélevés dans les vaisseaux rétrobulbaires ; le sang collecté a été centrifugé à 3000 ×gpendant 10 min pour séparer le sérum.Luxation cervicaleL'examen a été réalisé immédiatement après le prélèvement sanguin, et les échantillons de foie ont été rapidement prélevés. Une partie de l'échantillon de foie a été immédiatement conservée à −20 °C jusqu'à l'analyse, et une autre partie a été excisée et fixée dans une solution à 10 %.formolsolution ; les tissus restants ont été conservés à −80 °C pour analyse histopathologique (Wang et al., 2008,Hsu et al., 2009,Nie et al., 2015).
Mesure des paramètres biochimiques dans le sérum
Les lésions hépatiques ont été évaluées en estimant laactivités enzymatiquesdes taux sériques d'ALT et d'AST à l'aide des kits commerciaux correspondants, conformément à leurs instructions (Nanjing, province du Jiangsu, Chine). Les activités enzymatiques ont été exprimées en unités par litre (U/l).
Mesure de MDA, SOD, GSH et GSH-Pxdans les homogénats de foie
Les tissus hépatiques ont été homogénéisés avec du sérum physiologique froid dans un rapport de 1:9 (p/v, foie:sérum physiologique). Les homogénats ont été centrifugés (2500 ×gpendant 10 min) afin de recueillir les surnageants pour les dosages ultérieurs. Les lésions hépatiques ont été évaluées selon les dosages hépatiques des taux de MDA et de GSH, ainsi que de SOD et de GSH-P.xActivités. Toutes ces activités ont été déterminées conformément aux instructions du kit (Nanjing, province du Jiangsu, Chine). Les résultats pour le MDA et le GSH ont été exprimés en nmol par mg de protéines (nmol/mg prot), et les activités de la SOD et du GSH-Pxont été exprimés en U par mg de protéines (U/mg prot).
Analyse histopathologique
Des portions de foie fraîchement obtenues ont été fixées dans un tampon à 10 %paraformaldéhydesolution de phosphate. L'échantillon a ensuite été inclus dans de la paraffine, découpé en sections de 3 à 5 μm, colorées avechématoxylineetéosine(H&E) selon une procédure standard, et finalement analysé parmicroscopie optique(Tian et al., 2012).
Analyse statistique
Les résultats ont été exprimés sous la forme de la moyenne ± écart type (ET). Ils ont été analysés à l'aide du logiciel statistique SPSS Statistics, version 19.0. Les données ont été soumises à une analyse de variance (ANOVA,p< 0,05) suivi du test de Dunnett et du test T3 de Dunnett pour déterminer les différences statistiquement significatives entre les valeurs des différents groupes expérimentaux. Une différence significative a été considérée à un niveau dep< 0,05.
Résultats et discussion
Constituants de l'AEO
Après analyse GC/MS, il a été constaté que l'huile essentielle d'eucalyptus contenait 25 constituants élués entre 10 et 35 min, et 21 constituants représentant 84 % de l'huile essentielle ont été identifiés (Tableau 1). L'huile volatile contenuemonoterpénoïdes(80,9 %), sesquiterpénoïdes (9,5 %), hydrocarbures saturés non ramifiés (4,86 %) et acétylène divers (4,86 %). Comparé à d'autres études (Guo et al., 2004), nous avons trouvé des monoterpénoïdes abondants (80,90 %) dans l'huile essentielle d'ail. Les résultats ont montré que le constituant le plus abondant de l'huile essentielle d'ail est le β-citronellol (16,23 %). Les autres principaux composants de l'huile essentielle d'ail sont le 1,8-cinéole (13,9 %),camphre(12,59 %),linalol(11,33%), α-pinène (7,21%), β-pinène (3,99%),thymol(3,22 %), etmyrcène(2,02 %). La variation de la composition chimique peut être liée aux conditions environnementales auxquelles la plante a été exposée, telles que l'eau minérale, la lumière du soleil, le stade de développement etnutrition.
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Huile essentielle pure de Saposhnikovia divaricata pour la fabrication de bougies et de savons, diffuseur en gros, nouvelle huile essentielle pour diffuseurs à roseaux
2.1. Préparation du SDE
Les rhizomes de SD ont été achetés sous forme d'herbe séchée auprès de Hanherb Co. (Guri, Corée). La taxonomie du matériel végétal a été confirmée par le Dr Go-Ya Choi de l'Institut coréen de médecine orientale (KIOM). Un spécimen de référence (numéro 2014 SDE-6) a été déposé dans l'Herbier coréen des ressources végétales standard. Les rhizomes séchés de SD (320 g) ont été extraits deux fois avec de l'éthanol à 70 % (avec un reflux de 2 h), puis concentrés sous pression réduite. La décoction a été filtrée, lyophilisée et conservée à 4 °C. Le rendement en extrait sec à partir des matières premières brutes était de 48,13 % (p/p).
2.2. Analyse quantitative par chromatographie liquide à haute performance (HPLC)
L'analyse chromatographique a été réalisée à l'aide d'un système HPLC (Waters Co., Milford, MA, États-Unis) et d'un détecteur à barrette de photodiodes. Pour l'analyse HPLC du SDE, le prim-O- l'étalon de glucosylcimifugine a été acheté auprès de l'Institut coréen de promotion de l'industrie de la médecine traditionnelle (Gyeongsan, Corée), etsec-O-glucosylhamaudol et 4′-O-β-D-glucosyl-5-O-méthylvisamminol ont été isolés dans notre laboratoire et identifiés par des analyses spectrales, principalement par RMN et MS.
Des échantillons de SDE (0,1 mg) ont été dissous dans de l'éthanol à 70 % (10 ml). La séparation chromatographique a été réalisée avec une colonne XSelect HSS T3 C18 (4,6 × 250 mm, 5μm, Waters Co., Milford, MA, États-Unis). La phase mobile était composée d'acétonitrile (A) et d'acide acétique à 0,1 % dans l'eau (B) à un débit de 1,0 mL/min. Un programme de gradient à plusieurs étapes a été utilisé comme suit : 5 % A (0 min), 5–20 % A (0–10 min), 20 % A (10–23 min) et 20–65 % A (23–40 min). La longueur d'onde de détection a été balayée à 210–400 nm et enregistrée à 254 nm. Le volume d'injection était de 10,0μL. Des solutions standard pour la détermination de trois chromones ont été préparées à une concentration finale de 7,781 mg/mL (prim-O-glucosylcimifugine), 31,125 mg/mL (4′-O-β-D-glucosyl-5-O-méthylvisamminol) et 31,125 mg/mL (sec-O-glucosylhamaudol) dans du méthanol et conservé à 4°C.
2.3. Évaluation de l'activité anti-inflammatoireIn vitro
2.3.1. Culture cellulaire et traitement des échantillons
Les cellules RAW 264.7 ont été obtenues auprès de l'American Type Culture Collection (ATCC, Manassas, VA, États-Unis) et cultivées dans un milieu DMEM contenant 1 % d'antibiotiques et 5,5 % de FBS. Les cellules ont été incubées dans une atmosphère humidifiée contenant 5 % de CO2 à 37 °C. Pour stimuler les cellules, le milieu a été remplacé par du milieu DMEM frais et du lipopolysaccharide (LPS, Sigma-Aldrich Chemical Co., St. Louis, MO, États-Unis) à 1μg/mL a été ajouté en présence ou en l'absence de SDE (200 ou 400μg/mL) pendant 24 h supplémentaires.
2.3.2. Détermination de l'oxyde nitrique (NO), de la prostaglandine E2 (PGE2) et du facteur de nécrose tumoraleα(TNF-α) et la production d'interleukine-6 (IL-6)
Les cellules ont été traitées avec du SDE et stimulées avec du LPS pendant 24 h. La production de NO a été analysée en mesurant les nitrites à l'aide du réactif de Griess, conformément à une étude précédente [12]. Sécrétion des cytokines inflammatoires PGE2, TNF-α, et l'IL-6 a été dosée à l'aide d'un kit ELISA (systèmes R&D) conformément aux instructions du fabricant. Les effets du SDE sur la production de NO et de cytokines ont été déterminés à 540 nm ou 450 nm à l'aide d'un Wallac EnVision.™lecteur de microplaques (PerkinElmer).
2.4. Évaluation de l'activité antiarthrosiqueIn vivo
2.4.1. Animaux
Des rats mâles Sprague-Dawley (âgés de 7 semaines) ont été achetés auprès de Samtako Inc. (Osan, Corée) et hébergés dans des conditions contrôlées avec un cycle lumière/obscurité de 12 heures à°C et% d'humidité. Les rats ont reçu une alimentation et de l'eau de laboratoiread libitumToutes les procédures expérimentales ont été réalisées conformément aux directives des National Institutes of Health (NIH) et approuvées par le Comité de protection et d'utilisation des animaux de l'université de Daejeon (Daejeon, République de Corée).
2.4.2. Induction de l'arthrose par MIA chez le rat
Les animaux ont été randomisés et assignés à des groupes de traitement avant le début de l'étude (par groupe). Solution MIA (3 mg/50μUne solution saline à 0,9 % a été injectée directement dans l'espace intra-articulaire du genou droit sous anesthésie induite par un mélange de kétamine et de xylazine. Les rats ont été répartis aléatoirement en quatre groupes : (1) le groupe salin sans injection de MIA ; (2) le groupe MIA avec injection de MIA ; (3) le groupe traité par SDE (200 mg/kg) avec injection de MIA ; et (4) le groupe traité par indométacine (IM) (2 mg/kg) avec injection de MIA. Les rats ont reçu du SDE et de l'IM par voie orale une semaine avant l'injection de MIA pendant quatre semaines. La posologie de SDE et de l'IM utilisée dans cette étude était basée sur celle utilisée dans des études précédentes.10,13,14].
2.4.3. Mesures de la répartition du poids des pattes arrière
Après l'induction de l'OA, l'équilibre initial de la capacité de charge des pattes arrière a été perturbé. Un testeur d'incapacitance (Linton Instrumentation, Norfolk, Royaume-Uni) a été utilisé pour évaluer les variations de la tolérance à la charge. Les rats ont été soigneusement placés dans la chambre de mesure. La force de charge exercée par le membre postérieur a été moyennée sur une période de 3 s. Le rapport de répartition du poids a été calculé par l'équation suivante : [poids du membre postérieur droit/(poids du membre postérieur droit + poids du membre postérieur gauche)] × 100 [15].
2.4.4. Mesures des taux de cytokines sériques
Les échantillons sanguins ont été centrifugés à 1 500 g pendant 10 minutes à 4 °C ; le sérum a ensuite été prélevé et conservé à −70 °C jusqu’à son utilisation. Les taux d’IL-1β, IL-6, TNF-α, et PGE2 dans le sérum ont été mesurés à l'aide de kits ELISA de R&D Systems (Minneapolis, MN, États-Unis) conformément aux instructions du fabricant.
2.4.5. Analyse RT-PCR quantitative en temps réel
L'ARN total a été extrait du tissu articulaire du genou à l'aide du réactif TRI® (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, États-Unis), rétrotranscrit en ADNc et amplifié par PCR à l'aide d'un kit TM One Step RT PCR avec SYBR green (Applied Biosystems, Grand Island, NY, États-Unis). La PCR quantitative en temps réel a été réalisée à l'aide du système Applied Biosystems 7500 Real-Time PCR (Applied Biosystems, Grand Island, NY, États-Unis). Les séquences d'amorces et de sondes sont présentées dans le tableau.1Des aliquotes d'ADNc d'échantillon et une quantité égale d'ADNc de GAPDH ont été amplifiées avec le mélange maître TaqMan® Universal PCR contenant de l'ADN polymérase, conformément aux instructions du fabricant (Applied Biosystems, Foster, CA, États-Unis). Les conditions de PCR étaient de 2 min à 50 °C, 10 min à 94 °C, 15 s à 95 °C et 1 min à 60 °C pendant 40 cycles. La concentration du gène cible a été déterminée par la méthode comparative Ct (nombre de cycles seuil au point de croisement entre le tracé d'amplification et le seuil), conformément aux instructions du fabricant.
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Huile essentielle pure de Dalbergia Odoriferae Lignum pour la fabrication de bougies et de savons, diffuseur en gros, nouvelle huile essentielle pour diffuseurs à roseaux
La plante médicinaleDalbergia odoriferaEspèce T. Chen, également appeléeLignum Dalbergia odoriferae[1], appartient au genreDalbergia, famille des Fabacées (Légumineuses) [2]. Cette plante a été largement distribuée dans les régions tropicales d'Amérique centrale et du Sud, d'Afrique, de Madagascar et d'Asie de l'Est et du Sud [1,3], notamment en Chine [4].D. odoriferaL'espèce, connue sous le nom de « Jiangxiang » en chinois, « Kangjinhyang » en coréen et « Koshinko » dans les médicaments japonais, a été utilisée en médecine traditionnelle pour le traitement des maladies cardiovasculaires, du cancer, du diabète, des troubles sanguins, de l'ischémie, des gonflements, de la nécrose, des douleurs rhumatismales, etc. [5–7]. En particulier, à partir de préparations à base de plantes chinoises, le bois de cœur a été trouvé et a été couramment utilisé dans le cadre de mélanges de médicaments commerciaux pour les traitements cardiovasculaires, notamment la décoction Qi-Shen-Yi-Qi, les pilules Guanxin-Danshen et l'injection Danshen [5,6,8–11]. Comme beaucoup d’autresDalbergiaespèces, des études phytochimiques ont démontré la présence de dérivés prédominants de flavonoïdes, de phénols et de sesquiterpènes dans diverses parties de cette plante, notamment au niveau du bois de cœur [12]. De plus, un certain nombre de rapports bioactifs sur les activités cytotoxiques, antibactériennes, antioxydantes, anti-inflammatoires, antithrombotiques, anti-ostéosarcome, anti-ostéoporose et vasorelaxantes et les activités inhibitrices de l'alpha-glucosidase indiquent que les deuxD. odoriferaLes extraits bruts et leurs métabolites secondaires constituent des ressources précieuses pour le développement de nouveaux médicaments. Cependant, aucune preuve n'a été rapportée quant à l'opinion générale concernant cette plante. Dans cette revue, nous présentons un aperçu des principaux composants chimiques et des évaluations biologiques. Cette revue contribuera à la compréhension des valeurs traditionnelles de la plante.D. odoriferaet d’autres espèces apparentées, et fournit les lignes directrices nécessaires pour les recherches futures.
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Huile d'Atractylodes Lancea pure et naturelle, vente en gros, pour l'industrie chimique quotidienne, extrait d'herbes, huile d'Atractylis
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Huile d'Atractylodes Lancea pure et naturelle, vente en gros, pour l'industrie chimique quotidienne, extrait d'herbes, huile d'Atractylis
Qu'est-ce que l'extrait de racine d'Atractylodes lancea ?
L'Atractylodes lancea est une plante d'origine chinoise, précieuse en médecine, cultivée pour ses rhizomes, qui contiennent des huiles essentielles.
Utilisation et avantages :
Il possède des propriétés anti-inflammatoires et apaise la peau dès son application. Il peut être utile pour les peaux à tendance acnéique et irritées.
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Teneur en huile de menthol, de camphre et de bornéol pour le bain et l'aromathérapie
Avantages et utilisations pour la santé
Le bornéol offre un mélange très bénéfique de médecines occidentale et orientale. Ses effets sont largement répandus dans le traitement de diverses affections. En médecine chinoise, il est associé au foie, aux méridiens de la rate, au cœur et aux poumons. Voici quelques-uns de ses nombreux bienfaits pour la santé.
Combat les maladies respiratoires et pulmonaires
De nombreuses études suggèrent que les terpènes, et le bornéol en particulier, réduisent efficacement les maladies respiratoires. Le bornéol aefficacité démontréepour réduire l'inflammation pulmonaire en diminuant les cytokines inflammatoires et l'infiltration inflammatoire. Les adeptes de la médecine chinoise utilisent également couramment le bornéol pour traiter la bronchite et d'autres affections similaires.
Propriétés anticancéreuses
Le bornéol a également démontrépropriétés anticancéreusesen augmentant l'action de la sélénocystéine (SeC). Cela a réduit la propagation cancéreuse par mort apoptotique (programmée) des cellules cancéreuses. De nombreuses études ont également montré que le bornéol augmentait l'efficacité deciblage de médicaments antitumoraux.
Analgésique efficace
Dans unétudeConcernant la douleur postopératoire, l'application topique de bornéol a entraîné une réduction significative de la douleur par rapport à un groupe témoin sous placebo. De plus, les acupuncteurs ont tendance à utiliser le bornéol en application topique pour ses propriétés analgésiques.
Action anti-inflammatoire
Le bornéol adémontrébloquant certains canaux ioniques favorisant la stimulation de la douleur et l'inflammation. Il contribue également à soulager la douleur liée à des maladies inflammatoires telles quepolyarthrite rhumatoïde.
Effets neuroprotecteurs
Le bornéol offre une certaine protection contremort cellulaire neuronaleen cas d'accident vasculaire cérébral ischémique. Il facilite également la régénération et la réparation du tissu cérébral. Cet effet neuroprotecteur serait dû à la modification de la perméabilité du cerveau.barrière hémato-encéphalique.
Combat le stress et la fatigue
Certains consommateurs de variétés de cannabis à forte teneur en bornéol suggèrent que cela diminue leur niveau de stress et leur fatigue, permettant ainsi un état de relaxation sans sédation complète. Les adeptes de la médecine chinoise reconnaissent égalementson potentiel de soulagement du stressl.
Effet d'entourage
Comme pour d'autres terpènes, les effets du bornéol en combinaison avec les cannabinoïdes du cannabis ont démontré laeffet d'entourage.Cela se produit lorsque les composés agissent ensemble pour offrir un bénéfice thérapeutique accru. Le bornéol peut augmenter la perméabilité de la barrière hémato-encéphalique, facilitant ainsi le passage des molécules thérapeutiques vers le système nerveux central.
Outre ses nombreuses applications médicinales, le bornéol est également couramment utilisé dans les insectifuges en raison de sa toxicité naturelle pour de nombreux insectes. Les parfumeries utilisent également le bornéol pour son parfum agréable.
Risques potentiels et effets secondaires
Le bornéol est souvent considéré comme un terpène secondaire du cannabis, ce qui signifie qu'il est présent en quantités relativement faibles. Ces faibles doses de bornéol sont considérées comme relativement sûres. Cependant, à fortes doses isolées ou lors d'une exposition prolongée, le bornéol peut avoir des effets néfastes.risques potentiels et effets secondaires, y compris:
- Irritation cutanée
- Irritation du nez et de la gorge
- Mal de tête
- Nausées et vomissements
- Vertiges
- Étourdissements
- Évanouissement
Avec une exposition extrêmement élevée au bornéol, les individus peuvent ressentir :
- Agitation
- Agitation
- Inattention
- crises
- En cas d'ingestion, il peut être hautement toxique
Il est important de noter que la quantité présente dans le cannabis est peu susceptible de provoquer ces symptômes. De plus, les doses relativement faibles utilisées pour l'analgésie et d'autres effets ne provoquent pas d'irritation.
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Huile essentielle pure de Cnidii Fructus pour la fabrication de bougies et de savons, diffuseur en gros, nouvelle huile essentielle pour diffuseurs à roseaux
Le Cnidium est une plante originaire de Chine. On l'a également trouvée aux États-Unis, dans l'Oregon. Ses fruits, ses graines et d'autres parties de la plante sont utilisés en médecine.
Le cnidium est utilisé en médecine traditionnelle chinoise (MTC) depuis des millénaires, souvent pour traiter des affections cutanées. Il n'est donc pas surprenant qu'il soit un ingrédient courant des lotions, crèmes et onguents chinois.
Le cnidium est pris par voie orale pour améliorer les performances sexuelles et la libido, ainsi que pour traiter la dysfonction érectile (DE). Il est également utilisé en cas de difficultés à procréer (infertilité), en musculation, en cas de cancer, de fragilité osseuse (ostéoporose) et d'infections fongiques et bactériennes. Certaines personnes en prennent également pour augmenter leur énergie.
Le Cnidium est appliqué directement sur la peau pour les démangeaisons, les éruptions cutanées, l'eczéma et la teigne.
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Huile parfumée de marque Pure Oud pour la fabrication de bougies et de savons, diffuseur en gros d'huile essentielle neuve pour diffuseurs à roseaux
Composition chimique de l'ATR
La composition chimique de l'ATR est principalement composée de composants volatils et non volatils. L'huile essentielle d'ATR (ATEO) est considérée comme son principe actif, et sa teneur en ATEO est le seul indicateur permettant de déterminer sa teneur en ATR. Actuellement, les recherches sur les composants volatils sont nombreuses, tandis que les composants non volatils sont relativement peu nombreux. Les composants volatils sont relativement complexes, et leurs principaux types structuraux sont les phénylpropanoïdes (phénylpropanoïdes simples, lignanes et coumarines) et les terpénoïdes (monoterpènes, sesquiterpènes, diterpénoïdes et triterpènes). Les composants non volatils sont principalement les alcaloïdes, les aldéhydes et les acides, les quinones et les cétones, les stérols, les acides aminés et les glucides. Les résultats de l'étude de la composition chimique de l'ATR contribueront au développement de recherches de qualité.
Composition volatile
Les chercheurs ont utilisé des techniques d'analyse telles que la chromatographie et la chromatographie en phase gazeuse couplée à une spectrométrie de masse (GC-MS) pour analyser les composants chimiques de l'ATR provenant de différentes origines, de différents lots, de différentes méthodes d'extraction et de différentes parties. Des études antérieures ont montré que les principaux composants chimiques de l'ATR étaient des huiles volatiles, un indicateur important pour l'évaluation de la qualité de l'ATR. L'α-asarone et la β-asarone représentaient 95 % des huiles volatiles de l'ATR et ont été identifiées comme des composants caractéristiques.Figure 1) (Lam et al., 2016a). La Pharmacopée de la République populaire de Chine (édition 2020) stipule que la teneur en huile volatile de l'ATR ne doit pas être inférieure à 1,0 % (mL/g). Actuellement, plusieurs types de composants d'huile volatile ont été détectés dans l'ATR.
