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Huile essentielle de feuille d'eucalyptus pure et naturelle pour les soins de la peau et du corps
Méthode d'extraction ou de traitement : distillation à la vapeur
Partie d'extraction par distillation : feuille
Origine du pays : Chine
Application : Diffusion/aromathérapie/massage
Durée de conservation : 3 ans
Service personnalisé : étiquette et boîte personnalisées ou selon vos besoins
Certification : GMPC/FDA/ISO9001/MSDS/COA
L'huile essentielle d'eucalyptus réagit au mucus et le fluidifie pour soulager instantanément l'essoufflement et autres problèmes respiratoires. Son pouvoir insectifuge en fait un véritable répulsif. Utilisée en aromathérapie, elle clarifie les pensées. Ses bienfaits thérapeutiques sont dus à ses propriétés antimicrobiennes, antibactériennes, antiseptiques, antispasmodiques et antivirales. Utilisez l'huile essentielle d'eucalyptus contre divers problèmes de peau et de santé. Elle contient de l'eucalyptol, également connu sous le nom de cinéole. Ce composé contribuera à votre santé et à votre bien-être général.
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Huile essentielle de lavande biologique pure et naturelle pour les soins de la peau en aromathérapie
Méthode d'extraction ou de traitement : Distillation à la vapeur
Partie extraction par distillation : fleur
Origine du pays : Chine
Application : Diffusion/aromathérapie/massage
Durée de conservation : 3 ans
Service personnalisé : étiquette et boîte personnalisées ou selon vos besoins
Certification : GMPC/FDA/ISO9001/MSDS/COA
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Huile essentielle de Magnolia Officmalis Cortex, 100 % pure et naturelle, pour les soins de la peau
Le parfum de Hou Po est immédiatement amer et fortement piquant, puis s'ouvre progressivement sur une douceur et une chaleur profondes et sirupeuses.
Le Hou Po est lié aux éléments Terre et Métal, où sa chaleur amère agit puissamment pour faire descendre le Qi et assécher l'humidité. Grâce à ces propriétés, il est utilisé en médecine chinoise pour soulager la stagnation et l'accumulation dans le tube digestif, ainsi que la toux et la respiration sifflante dues aux mucosités obstruant les poumons.
Le Magnolia officinal est un arbre à feuilles caduques originaire des montagnes et vallées du Sichuan, du Hubei et d'autres provinces de Chine. Son écorce, très aromatique et utilisée en médecine traditionnelle chinoise, est extraite des tiges, des branches et des racines et récoltée d'avril à juin. Son écorce épaisse et lisse, riche en huile, présente une couleur violacée à l'intérieur, avec un éclat cristallin.
Les praticiens peuvent envisager de combiner Hou Po avec l'huile essentielle de Qing Pi comme note de tête dans les mélanges visant à briser les accumulations.
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Emballage personnalisé OEM Huile naturelle de rhizome de Macrocephalae
Agent chimiothérapeutique efficace, le 5-fluorouracile (5-FU) est largement utilisé dans le traitement des tumeurs malignes du tube digestif, de la tête, du cou, du thorax et des ovaires. Le 5-FU est le médicament de première intention pour le cancer colorectal en clinique. Son mécanisme d'action consiste à bloquer la transformation de l'acide nucléique uracile en acide nucléique thymine dans les cellules tumorales, puis à affecter la synthèse et la réparation de l'ADN et de l'ARN pour obtenir son effet cytotoxique (Afzal et al., 2009 ; Ducreux et al., 2015 ; Longley et al., 2003). Cependant, le 5-FU provoque également une diarrhée induite par la chimiothérapie (DIC), l'un des effets indésirables les plus fréquents chez de nombreux patients (Filho et al., 2016). L'incidence de la diarrhée chez les patients traités par 5-FU atteignait 50 à 80 %, ce qui a sérieusement affecté la progression et l'efficacité de la chimiothérapie (Iacovelli et al., 2014 ; Rosenoff et al., 2006). Par conséquent, il est crucial de trouver un traitement efficace contre la CID induite par le 5-FU.
Actuellement, des interventions médicamenteuses et non médicamenteuses ont été intégrées au traitement clinique du DIC. Ces interventions comprennent une alimentation équilibrée et des suppléments en sel, sucre et autres nutriments. Des médicaments tels que le lopéramide et l'octréotide sont couramment utilisés dans le traitement antidiarrhéique du DIC (Benson et al., 2004). De plus, les ethnomédecines sont également adoptées pour traiter le DIC avec leur propre thérapie dans divers pays. La médecine traditionnelle chinoise (MTC) est une ethnomédecine typique, pratiquée depuis plus de 2 000 ans dans les pays d'Asie de l'Est, notamment en Chine, au Japon et en Corée (Qi et al., 2010). La MTC soutient que les médicaments chimiothérapeutiques provoqueraient une consommation de Qi, une déficience de la rate, une dysharmonie gastrique et une humidité endophyte, entraînant un dysfonctionnement de la conduction intestinale. Selon la théorie de la MTC, la stratégie thérapeutique du DIC devrait principalement reposer sur la supplémentation en Qi et le renforcement de la rate (Wang et al., 1994).
Les racines séchées deAtractylodes macrocephalaKoidz. (AM) etPanax ginsengLes CA Mey. (PG) sont des plantes médicinales typiques de la médecine traditionnelle chinoise (MTC) qui ont les mêmes effets : supplémentation du Qi et renforcement de la rate (Li et al., 2014). L'AM et le PG sont généralement utilisés en association (la forme la plus simple de compatibilité des plantes chinoises) avec les effets de supplémentation du Qi et de renforcement de la rate pour traiter la diarrhée. Par exemple, l'AM et le PG ont été documentés dans des formules antidiarrhéiques classiques telles que Shen Ling, Bai Zhu San et Si Jun Zi Tang.Taiping Huimin Heji Ju Fang(Dynastie Song, Chine) et Bu Zhong Yi Qi Tang dePi Wei Lun(Dynastie Yuan, Chine) (Fig. 1). Plusieurs études antérieures ont rapporté que les trois formules possèdent la capacité de soulager le CID (Bai et al., 2017 ; Chen et al., 2019 ; Gou et al., 2016). De plus, notre étude précédente a montré que la capsule Shenzhu qui ne contient que de l'AM et du PG a des effets potentiels sur les traitements de la diarrhée, de la colite (syndrome de xiexie) et d'autres maladies gastro-intestinales (Feng et al., 2018). Cependant, aucune étude n'a discuté de l'effet et du mécanisme de l'AM et du PG dans le traitement du CID, que ce soit en association ou seul.
Le microbiote intestinal est désormais considéré comme un facteur potentiel pour comprendre le mécanisme thérapeutique de la MTC (Feng et al., 2019). Des études modernes indiquent que le microbiote intestinal joue un rôle crucial dans le maintien de l'homéostasie intestinale. Un microbiote intestinal sain contribue à la protection de la muqueuse intestinale, au métabolisme, à l'homéostasie et à la réponse immunitaires, ainsi qu'à la suppression des agents pathogènes (Thursby et Juge, 2017 ; Pickard et al., 2017). Un microbiote intestinal perturbé altère directement ou indirectement les fonctions physiologiques et immunitaires du corps humain, induisant des réactions secondaires comme la diarrhée (Patel et al., 2016 ; Zhao et Shen, 2010). Des recherches ont montré que le 5-FU modifiait considérablement la structure du microbiote intestinal chez des souris diarrhéiques (Li et al., 2017). Par conséquent, les effets du matin et du soir sur la diarrhée induite par le 5-FU pourraient être médiés par le microbiote intestinal. Cependant, on ne sait pas encore si l’AM et le PG seuls ou en combinaison pourraient prévenir la diarrhée induite par le 5-FU en modulant le microbiote intestinal.
Afin d'étudier les effets antidiarrhéiques et le mécanisme sous-jacent de l'AM et du PG, nous avons utilisé le 5-FU pour simuler un modèle de diarrhée chez la souris. Nous nous sommes concentrés ici sur les effets potentiels de l'administration unique et combinée (AP) deAtractylodes macrocephalahuile essentielle (AMO) etPanax ginsengsaponines totales (PGS), composants actifs respectivement extraits de l'AM et du PG, sur la diarrhée, la pathologie intestinale et la structure microbienne après chimiothérapie 5-FU.
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Huile essentielle d'eucommiae foliuml 100 % pure et naturelle pour les soins de la peau
Eucommia ulmoides(UE) (communément appelé « Du Zhong » en chinois) appartient à la famille des Eucommiaceae, un genre de petit arbre originaire de Chine centrale [1]. Cette plante est largement cultivée en Chine en raison de son importance médicinale. Environ 112 composés ont été isolés de l'UE, dont des lignanes, des iridoïdes, des composés phénoliques, des stéroïdes et d'autres composés. Des formules à base de plantes complémentaires à cette plante (comme une délicieuse tisane) ont montré des propriétés médicinales. La feuille d'UE présente une activité plus élevée liée au cortex, à la fleur et au fruit.2,3]. Il a été rapporté que les feuilles d'UE améliorent la force des os et les muscles du corps [4], conduisant ainsi à la longévité et favorisant la fertilité chez l'homme [5]. Une délicieuse formule de thé à base de feuilles d'UE a été rapportée comme réduisant l'excès de graisse et améliorant le métabolisme énergétique. Des composés flavonoïdes (tels que la rutine, l'acide chlorogénique, l'acide férulique et l'acide caféique) auraient une activité antioxydante dans les feuilles d'UE [6].
Bien qu'il existe une littérature abondante sur les propriétés phytochimiques de l'UE, peu d'études ont été menées sur les propriétés pharmacologiques des différents composés extraits de l'écorce, des graines, des tiges et des feuilles de l'UE. Cet article de synthèse fournira des informations détaillées sur les différents composés extraits des différentes parties (écorce, graines, tige et feuille) de l'UE et sur leurs utilisations potentielles pour la santé, en s'appuyant sur des données scientifiques probantes. Il fournira ainsi une référence pour l'application de l'UE.
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Huile de Houttuynia cordata pure et naturelle Huile de Houttuynia cordata Huile de Lchthammolum
Dans la plupart des pays en développement, 70 à 95 % de la population a recours aux médecines traditionnelles pour les soins de santé primaires et 85 % d’entre elles utilisent des plantes ou leurs extraits comme substance active.1La recherche de nouveaux composés biologiquement actifs issus des plantes repose généralement sur des informations ethniques et populaires spécifiques obtenues auprès des praticiens locaux et est toujours considérée comme une source importante pour la découverte de médicaments. En Inde, environ 2 000 médicaments sont d'origine végétale.2] Compte tenu de l'intérêt généralisé pour l'utilisation des plantes médicinales, la présente revue surHouttuynia cordataThunb. fournit des informations à jour en référence aux études botaniques, commerciales, ethnopharmacologiques, phytochimiques et pharmacologiques qui apparaissent dans la littérature.H. cordataThunb. appartient à la familleSaururacéeset est communément appelée queue de lézard chinoise. C'est une plante herbacée vivace à rhizome stolonifère présentant deux chémotypes distincts.3,4] Le chémotype chinois de l'espèce se trouve dans des conditions sauvages et semi-sauvages dans le nord-est de l'Inde d'avril à septembre.[5,6,7]H. cordataest disponible en Inde, en particulier dans la vallée du Brahmapoutre en Assam et est utilisé par diverses tribus d'Assam sous forme de légume ainsi qu'à diverses fins médicinales traditionnellement.
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Huile d'Arctium lappa 100 % pure, certifiée qualité, certifiée au citron vert.
Avantages pour la santé
La racine de bardane est souvent consommée, mais on peut aussi la sécher et l'infuser en tisane. C'est une excellente source d'inuline, unprébiotiqueDes fibres qui facilitent la digestion et améliorent la santé intestinale. De plus, cette racine contient des flavonoïdes (nutriments végétaux).composés phytochimiqueset des antioxydants connus pour leurs bienfaits pour la santé.
De plus, la racine de bardane peut offrir d’autres avantages tels que :
Réduire l'inflammation chronique La racine de bardane contient un certain nombre d'antioxydants, tels que la quercétine, les acides phénoliques et la lutéoline, qui peuvent aider à protéger vos cellules contreradicaux libresCes antioxydants aident à réduire l’inflammation dans tout le corps.
Risques pour la santé
La racine de bardane est considérée comme sûre à consommer ou à boire en tisane. Cependant, cette plante ressemble beaucoup à la belladone, qui est toxique. Il est recommandé de n'acheter la racine de bardane qu'auprès de vendeurs de confiance et d'éviter de la cueillir soi-même. De plus, les informations sur ses effets chez les enfants et les femmes enceintes sont rares. Consultez votre médecin avant d'utiliser la racine de bardane chez les enfants ou si vous êtes enceinte.
Voici quelques autres risques possibles pour la santé à prendre en compte si vous utilisez de la racine de bardane :
Déshydratation accrue
La racine de bardane agit comme un diurétique naturel, ce qui peut entraîner une déshydratation. Si vous prenez des diurétiques ou d'autres diurétiques, évitez la racine de bardane. Si vous prenez ces médicaments, il est important de connaître les autres médicaments, plantes et ingrédients susceptibles d'entraîner une déshydratation.
Réaction allergique
Si vous êtes sensible ou avez des antécédents de réactions allergiques aux marguerites, à l’ambroisie ou aux chrysanthèmes, vous courez un risque accru de réaction allergique à la racine de bardane.
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Prix de gros en vrac 100% Pure Huile d'AsariRadix Et Rhizoma Relax Aromathérapie Eucalyptus globulus
Des études animales et in vitro ont examiné les effets antifongiques, anti-inflammatoires et cardiovasculaires potentiels du sassafras et de ses composants. Cependant, les essais cliniques manquent et le sassafras n'est pas considéré comme sûr. Le safrole, principal composant de l'écorce et de l'huile de racine de sassafras, a été interdit par la Food and Drug Administration (FDA) américaine, y compris comme arôme ou parfum, et ne doit être utilisé ni en usage interne ni en usage externe, car il est potentiellement cancérigène. Le safrole a été utilisé dans la production illégale de 3,4-méthylènedioxyméthamphétamine (MDMA), également connue sous les noms de rue « ecstasy » ou « Molly », et la vente de safrole et d'huile de sassafras est surveillée par la Drug Enforcement Administration (DEA) américaine.
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Huile essentielle de Stellariae Radix 100 % pure (neuf) - Prix de gros - Relax Aromathérapie - Eucalyptus globulus
La pharmacopée chinoise (édition 2020) exige que l'extrait méthanolique de YCH ne soit pas inférieur à 20,0 % [2], sans autre indicateur d'évaluation de la qualité spécifié. Les résultats de cette étude montrent que les teneurs des extraits méthanoliques des échantillons sauvages et cultivés étaient conformes à la norme de la pharmacopée, et qu'il n'y avait pas de différence significative entre eux. Par conséquent, il n'y avait pas de différence de qualité apparente entre les échantillons sauvages et cultivés, selon cet indice. Cependant, les teneurs en stérols totaux et en flavonoïdes totaux des échantillons sauvages étaient significativement plus élevées que celles des échantillons cultivés. Une analyse métabolomique plus poussée a révélé une abondante diversité de métabolites entre les échantillons sauvages et cultivés. De plus, 97 métabolites significativement différents ont été éliminés, qui sont répertoriés dans leTableau supplémentaire S2Parmi ces métabolites significativement différents figurent le β-sitostérol (ID : M397T42) et les dérivés de la quercétine (M447T204_2), dont les principes actifs ont été rapportés. Des constituants non rapportés auparavant, tels que la trigonelline (M138T291_2), la bétaïne (M118T277_2), la fustine (M269T36), la roténone (M241T189), l'arctiine (M557T165) et l'acide loganique (M399T284_2), ont également été inclus parmi les métabolites différentiels. Ces composants jouent divers rôles dans les domaines de l'antioxydation, de l'anti-inflammatoire, de la lutte contre les radicaux libres, de l'anticancéreux et du traitement de l'athérosclérose. Ils pourraient donc constituer de nouveaux principes actifs potentiels de l'YCH. La teneur en principes actifs détermine l'efficacité et la qualité des substances médicinales.7]. En résumé, l'extrait au méthanol, seul indice d'évaluation de la qualité du YCH, présente certaines limites, et des marqueurs de qualité plus spécifiques doivent être explorés plus avant. Des différences significatives ont été observées dans les stérols totaux, les flavonoïdes totaux et les teneurs en de nombreux autres métabolites différentiels entre le YCH sauvage et le YCH cultivé ; il existe donc potentiellement des différences de qualité entre eux. Parallèlement, les ingrédients actifs potentiels nouvellement découverts dans le YCH pourraient constituer une valeur de référence importante pour l'étude des bases fonctionnelles du YCH et le développement ultérieur des ressources en YCH.
L'importance des matières médicinales authentiques est reconnue depuis longtemps dans la région d'origine spécifique pour la production de médicaments à base de plantes chinoises d'excellente qualité [8]. La qualité est un attribut essentiel des matières médicinales authentiques, et l'habitat est un facteur important affectant la qualité de ces matières. Depuis que le YCH a commencé à être utilisé en médecine, il a longtemps été dominé par le YCH sauvage. Suite à l'introduction et à la domestication réussies du YCH au Ningxia dans les années 1980, la source des matières médicinales de Yinchaihu est progressivement passée du YCH sauvage au YCH cultivé. Selon une précédente enquête sur les sources de YCH [9] et l'enquête de terrain de notre groupe de recherche ont révélé des différences significatives dans les aires de répartition des matières médicinales cultivées et sauvages. Le YCH sauvage est principalement réparti dans la région autonome Hui du Ningxia, province du Shaanxi, adjacente à la zone aride de la Mongolie intérieure et au centre du Ningxia. La steppe désertique de ces régions constitue notamment l'habitat le plus propice à la croissance du YCH. En revanche, le YCH cultivé est principalement réparti au sud de son aire de répartition sauvage, notamment dans le comté de Tongxin (Cultivé I) et ses environs, devenu la plus grande base de culture et de production de Chine, et dans le comté de Pengyang (Cultivé II), situé plus au sud et autre zone de production du YCH cultivé. De plus, les habitats de ces deux zones cultivées ne sont pas des steppes désertiques. Par conséquent, outre le mode de production, il existe également des différences significatives entre l'habitat du YCH sauvage et celui du YCH cultivé. L'habitat est un facteur important affectant la qualité des matières médicinales à base de plantes. Différents habitats affecteront la formation et l'accumulation de métabolites secondaires dans les plantes, affectant ainsi la qualité des médicaments [10,11]. Par conséquent, les différences significatives dans les teneurs en flavonoïdes totaux et en stérols totaux et dans l’expression des 53 métabolites que nous avons trouvées dans cette étude pourraient être le résultat de différences de gestion des champs et d’habitat.L'un des principaux effets de l'environnement sur la qualité des substances médicinales est le stress qu'il exerce sur les plantes sources. Un stress environnemental modéré tend à stimuler l'accumulation de métabolites secondaires.12,13]. L'hypothèse de l'équilibre croissance/différenciation stipule que, lorsque les nutriments sont en quantité suffisante, les plantes poussent principalement, tandis que lorsque les nutriments sont déficients, les plantes se différencient principalement et produisent davantage de métabolites secondaires [14Français ]. Le stress hydrique causé par le manque d'eau est le principal stress environnemental auquel sont confrontées les plantes dans les zones arides. Dans cette étude, l'état hydrique du YCH cultivé est plus abondant, avec des niveaux de précipitations annuelles significativement plus élevés que ceux du YCH sauvage (l'approvisionnement en eau du Cultivé I était environ 2 fois supérieur à celui du Sauvage ; le Cultivé II était environ 3,5 fois supérieur à celui du Sauvage). De plus, le sol dans l'environnement sauvage est un sol sableux, mais le sol des terres agricoles est un sol argileux. Comparé à l'argile, le sol sableux a une faible capacité de rétention d'eau et est plus susceptible d'aggraver le stress hydrique. Dans le même temps, le processus de culture était souvent accompagné d'arrosage, de sorte que le degré de stress hydrique était faible. Le YCH sauvage pousse dans des habitats naturels arides difficiles et peut donc subir un stress hydrique plus grave.L'osmorégulation est un mécanisme physiologique important par lequel les plantes font face au stress hydrique, et les alcaloïdes sont d'importants régulateurs osmotiques chez les plantes supérieures [15]. Les bétaïnes sont des composés d'ammonium quaternaire alcaloïdes hydrosolubles et peuvent agir comme osmoprotecteurs. Le stress hydrique peut réduire le potentiel osmotique des cellules, tandis que les osmoprotecteurs préservent et maintiennent la structure et l'intégrité des macromolécules biologiques, et atténuent efficacement les dommages causés aux plantes par le stress hydrique.16]. Par exemple, en cas de stress hydrique, la teneur en bétaïne de la betterave sucrière et du Lycium barbarum a augmenté de manière significative [17,18]. La trigonelline est un régulateur de la croissance cellulaire. En cas de stress hydrique, elle peut prolonger le cycle cellulaire, inhiber la croissance cellulaire et entraîner une diminution du volume cellulaire. L'augmentation relative de la concentration en soluté dans la cellule permet à la plante d'assurer une régulation osmotique et d'améliorer sa résistance au stress hydrique.19]. JIA X [20] ont constaté qu'avec une augmentation du stress hydrique, l'Astragalus membranaceus (une plante utilisée en médecine traditionnelle chinoise) produisait davantage de trigonelline, qui régule le potentiel osmotique et améliore la résistance au stress hydrique. Il a également été démontré que les flavonoïdes jouent un rôle important dans la résistance des plantes au stress hydrique [21,22]. Un grand nombre d'études ont confirmé qu'un stress hydrique modéré était propice à l'accumulation de flavonoïdes. Lang Duo-Yong et al. [23] ont comparé les effets du stress hydrique sur l'YCH en contrôlant la capacité de rétention d'eau au champ. Il a été constaté que le stress hydrique inhibait la croissance des racines dans une certaine mesure, mais en cas de stress hydrique modéré à sévère (40 % de la capacité de rétention d'eau au champ), la teneur totale en flavonoïdes de l'YCH augmentait. Parallèlement, en cas de stress hydrique, les phytostérols peuvent réguler la fluidité et la perméabilité des membranes cellulaires, inhiber la perte d'eau et améliorer la résistance au stress [24,25]. Par conséquent, l’accumulation accrue de flavonoïdes totaux, de stérols totaux, de bétaïne, de trigonelline et d’autres métabolites secondaires dans le YCH sauvage pourrait être liée à un stress hydrique de haute intensité.Dans cette étude, une analyse d'enrichissement de la voie KEGG a été réalisée sur les métabolites significativement différents entre les YCH sauvages et cultivés. Les métabolites enrichis incluaient ceux impliqués dans les voies du métabolisme de l'ascorbate et de l'aldarate, la biosynthèse des aminoacyl-ARNt, le métabolisme de l'histidine et le métabolisme de la bêta-alanine. Ces voies métaboliques sont étroitement liées aux mécanismes de résistance au stress des plantes. Parmi elles, le métabolisme de l'ascorbate joue un rôle important dans la production d'antioxydants, le métabolisme du carbone et de l'azote, la résistance au stress et d'autres fonctions physiologiques des plantes.26]; la biosynthèse des aminoacyl-ARNt est une voie importante pour la formation des protéines [27,28], impliquée dans la synthèse de protéines résistantes au stress. Les voies de l'histidine et de la β-alanine peuvent toutes deux améliorer la tolérance des plantes au stress environnemental [29,30]. Cela indique en outre que les différences de métabolites entre le YCH sauvage et cultivé étaient étroitement liées aux processus de résistance au stress.Le sol est la base matérielle de la croissance et du développement des plantes médicinales. L'azote (N), le phosphore (P) et le potassium (K) présents dans le sol sont des éléments nutritifs importants pour la croissance et le développement des plantes. La matière organique du sol contient également N, P, K, Zn, Ca, Mg et d'autres macroéléments et oligo-éléments nécessaires aux plantes médicinales. Un excès ou une carence en nutriments, ou un déséquilibre des ratios nutritionnels, affecteront la croissance, le développement et la qualité des substances médicinales. Chaque plante a des besoins nutritionnels différents.31,32,33]. Par exemple, un faible stress azoté a favorisé la synthèse d'alcaloïdes chez Isatis indigotica et a été bénéfique à l'accumulation de flavonoïdes chez des plantes telles que Tetrastigma hemsleyanum, Crataegus pinnatifida Bunge et Dichondra repens Forst. En revanche, un excès d'azote a inhibé l'accumulation de flavonoïdes chez des espèces telles qu'Erigeron breviscapus, Abrus cantoniensis et Ginkgo biloba, et a affecté la qualité des substances médicinales [34]. L'application d'engrais phosphatés a été efficace pour augmenter la teneur en acide glycyrrhizique et en dihydroacétone de la réglisse de l'Oural [35]. Lorsque la quantité appliquée dépassait 0,12 kg·m−2, la teneur totale en flavonoïdes de Tussilago farfara diminuait [36]. L'application d'un engrais phosphaté a eu un effet négatif sur la teneur en polysaccharides du rhizoma polygonati de la médecine traditionnelle chinoise [37], mais un engrais K était efficace pour augmenter sa teneur en saponines [38]. L'application de 450 kg·hm−2 d'engrais K s'est avérée la meilleure solution pour la croissance et l'accumulation de saponine de Panax notoginseng âgé de deux ans [39]. Sous le rapport N:P:K = 2:2:1, les quantités totales d'extrait hydrothermal, d'harpagide et d'harpagoside étaient les plus élevées [40]. Le rapport élevé de N, P et K a favorisé la croissance de Pogostemon cablin et augmenté la teneur en huile volatile. Un faible rapport de N, P et K a augmenté la teneur en principaux composants actifs de l'huile de feuilles de tige de Pogostemon cablin.41]. L'YCH est une plante tolérante aux sols arides et pourrait avoir des besoins spécifiques en nutriments tels que N, P et K. Dans cette étude, comparé à l'YCH cultivé, le sol des plantes sauvages d'YCH était relativement aride : les teneurs en matière organique, N total, P total et K total étaient respectivement d'environ 1/10, 1/2, 1/3 et 1/3 de celles des plantes cultivées. Par conséquent, les différences dans les nutriments du sol pourraient être une autre raison des différences entre les métabolites détectés dans l'YCH cultivé et sauvage. Weibao Ma et al. [42] ont constaté que l'application d'une certaine quantité d'engrais azoté et phosphaté améliorait significativement le rendement et la qualité des semences. Cependant, l'effet des éléments nutritifs sur la qualité du YCH n'est pas clair, et les mesures de fertilisation visant à améliorer la qualité des matières médicinales nécessitent des études plus approfondies.Les plantes médicinales chinoises ont les caractéristiques suivantes : « Les habitats favorables favorisent le rendement et les habitats défavorables améliorent la qualité » [43]. Au cours du passage progressif de l'YCH sauvage à l'YCH cultivé, l'habitat des plantes est passé de la steppe désertique aride et stérile à des terres agricoles fertiles et abondantes en eau. L'habitat de l'YCH cultivé est supérieur et le rendement est plus élevé, ce qui contribue à répondre à la demande du marché. Cependant, cet habitat supérieur a entraîné des modifications significatives des métabolites de l'YCH ; des recherches supplémentaires seront nécessaires pour déterminer si cela contribue à améliorer la qualité de l'YCH et comment parvenir à une production de haute qualité grâce à des mesures culturales fondées sur la science.La culture d'habitat simulé est une méthode de simulation de l'habitat et des conditions environnementales des plantes médicinales sauvages, basée sur la connaissance de l'adaptation à long terme des plantes à des stress environnementaux spécifiques [43]. En simulant divers facteurs environnementaux qui affectent les plantes sauvages, en particulier l'habitat d'origine des plantes utilisées comme sources de matériaux médicinaux authentiques, l'approche utilise une conception scientifique et une intervention humaine innovante pour équilibrer la croissance et le métabolisme secondaire des plantes médicinales chinoises [43]. Ces méthodes visent à optimiser le développement de substances médicinales de haute qualité. La culture en milieu naturel simulé devrait permettre une production efficace de YCH de haute qualité, même lorsque les bases pharmacodynamiques, les marqueurs de qualité et les mécanismes de réponse aux facteurs environnementaux restent flous. Par conséquent, nous suggérons que la conception scientifique et les mesures de gestion sur le terrain pour la culture et la production de YCH soient prises en tenant compte des caractéristiques environnementales de l'YCH sauvage, telles que les sols arides, stériles et sableux. Parallèlement, nous espérons que les chercheurs approfondiront leurs recherches sur les bases fonctionnelles et les marqueurs de qualité de l'YCH. Ces études pourront fournir des critères d'évaluation plus efficaces pour l'YCH et favoriser une production de haute qualité et le développement durable de la filière. -
Huile essentielle de Fructus Amomi aux herbes, diffuseurs de massage naturels, 1 kg en vrac, huile essentielle d'Amomum villosum
La famille des Zingibéracées suscite un intérêt croissant dans la recherche allélopathique en raison de la richesse de ses huiles volatiles et de l'aromaticité de ses espèces. Des recherches antérieures avaient montré que les composés chimiques du Curcuma zedoaria (zédoaire) [40], Alpinia zerumbet (Pers.) BLBurtt & RMSm. [41] et Zingiber officinale Rosc. [42] de la famille du gingembre ont des effets allélopathiques sur la germination des graines et la croissance des plantules de maïs, de laitue et de tomate. Notre étude est la première à rapporter l'activité allélopathique des composés volatils des tiges, des feuilles et des jeunes fruits d'A. villosum (un membre de la famille des Zingiberaceae). Le rendement en huile des tiges, des feuilles et des jeunes fruits était respectivement de 0,15 %, 0,40 % et 0,50 %, ce qui indique que les fruits produisent une plus grande quantité d'huiles volatiles que les tiges et les feuilles. Les principaux composants des huiles volatiles des tiges étaient le β-pinène, le β-phellandrène et l'α-pinène, dont le profil était similaire à celui des principaux composés chimiques de l'huile des feuilles, le β-pinène et l'α-pinène (hydrocarbures monoterpéniques). En revanche, l'huile des jeunes fruits était riche en acétate de bornyle et en camphre (monoterpènes oxygénés). Ces résultats ont été corroborés par les conclusions de Do N Dai [30,32] et Hui Ao [31] qui avait identifié les huiles de différents organes d'A. villosum.
Plusieurs études ont porté sur l'activité inhibitrice de ces principaux composés sur la croissance végétale d'autres espèces. Shalinder Kaur a constaté que l'α-pinène d'eucalyptus inhibait fortement la longueur des racines et la hauteur des pousses d'Amaranthus viridis L. à une concentration de 1,0 μL [43], et une autre étude a montré que l'α-pinène inhibait la croissance précoce des racines et provoquait des dommages oxydatifs dans les tissus racinaires par une génération accrue d'espèces réactives de l'oxygène [44]. Certains rapports ont avancé que le β-pinène inhibait la germination et la croissance des plantules des mauvaises herbes testées de manière dose-dépendante en perturbant l'intégrité de la membrane [45], modifiant la biochimie végétale et améliorant les activités des peroxydases et des polyphénols oxydases [46]. Le β-phellandrène a montré une inhibition maximale de la germination et de la croissance de Vigna unguiculata (L.) Walp à une concentration de 600 ppm [47], alors qu'à une concentration de 250 mg/m3, le camphre a supprimé la croissance des radicules et des pousses de Lepidium sativum L. [48]. Cependant, les recherches rapportant l'effet allélopathique de l'acétate de bornyle sont rares. Dans notre étude, les effets allélopathiques du β-pinène, de l'acétate de bornyle et du camphre sur la longueur des racines étaient plus faibles que pour les huiles volatiles à l'exception de l'α-pinène, tandis que l'huile de feuille, riche en α-pinène, était également plus phytotoxique que les huiles volatiles correspondantes des tiges et des fruits d'A. villosum, ces deux résultats indiquant que l'α-pinène pourrait être le produit chimique important pour l'allélopathie de cette espèce. Dans le même temps, les résultats ont également suggéré que certains composés présents en faible quantité dans l'huile de fruit pourraient contribuer à la production de l'effet phytotoxique, une découverte qui nécessite des recherches plus approfondies à l'avenir.Dans des conditions normales, l'effet allélopathique des substances allélochimiques est spécifique à chaque espèce. Jiang et al. ont constaté que l'huile essentielle produite par Artemisia sieversiana exerçait un effet plus puissant sur Amaranthus retroflexus L. que sur Medicago sativa L., Poa annua L. et Pennisetum alopecuroides (L.) Spreng. [49]. Dans une autre étude, l'huile volatile de Lavandula angustifolia Mill. a produit différents degrés d'effets phytotoxiques sur différentes espèces végétales. Lolium multiflorum Lam. était l'espèce acceptrice la plus sensible, la croissance de l'hypocotyle et de la radicule étant inhibée de 87,8 % et 76,7 %, respectivement, à une dose de 1 μL/mL d'huiles, mais la croissance de l'hypocotyle des plantules de concombre a été à peine affectée [20]. Nos résultats ont également montré qu’il y avait une différence de sensibilité aux composés volatils d’A. villosum entre L. sativa et L. perenne.Les composés volatils et les huiles essentielles d'une même espèce peuvent varier quantitativement et/ou qualitativement en fonction des conditions de croissance, des parties de la plante et des méthodes de détection. Par exemple, un rapport a démontré que le pyranoïde (10,3 %) et le β-caryophyllène (6,6 %) étaient les principaux composés volatils émis par les feuilles de Sambucus nigra, tandis que le benzaldéhyde (17,8 %), l'α-bulnésène (16,6 %) et le tétracosane (11,5 %) étaient abondants dans les huiles extraites des feuilles [50]. Dans notre étude, les composés volatils libérés par les matières végétales fraîches ont eu des effets allélopathiques plus marqués sur les plantes testées que les huiles volatiles extraites, les différences de réponse étant étroitement liées aux différences entre les composés allélochimiques présents dans les deux préparations. Les différences exactes entre les composés volatils et les huiles devront être étudiées plus en détail lors d'expériences ultérieures.Les différences dans la diversité microbienne et la structure de la communauté microbienne dans les échantillons de sol auxquels des huiles volatiles avaient été ajoutées étaient liées à la compétition entre les micro-organismes ainsi qu'à d'éventuels effets toxiques et à la durée de présence des huiles volatiles dans le sol. Vokou et Liotiri [51] ont constaté que l'application de quatre huiles essentielles (0,1 ml) sur un sol cultivé (150 g) activait la respiration des échantillons de sol. Même si la composition chimique des huiles différait, cela suggère que les huiles végétales sont utilisées comme source de carbone et d'énergie par les micro-organismes présents dans le sol. Les données issues de la présente étude ont confirmé que les huiles de la plante entière d'A. villosum ont contribué à l'augmentation notable du nombre d'espèces fongiques du sol dès le 14e jour suivant l'ajout d'huile, ce qui indique que l'huile pourrait fournir une source de carbone à davantage de champignons du sol. Une autre étude a rapporté un résultat : les micro-organismes du sol ont retrouvé leur fonction et leur biomasse initiales après une période temporaire de variation induite par l'ajout d'huile de Thymbra capitata L. (Cav), mais la dose maximale d'huile (0,93 µL d'huile par gramme de sol) n'a pas permis aux micro-organismes du sol de retrouver leur fonctionnalité initiale.52]. Dans l'étude actuelle, basée sur l'analyse microbiologique du sol après avoir été traité avec différents jours et concentrations, nous avons supposé que la communauté bactérienne du sol se rétablirait après plus de jours. En revanche, le microbiote fongique ne peut pas revenir à son état initial. Les résultats suivants confirment cette hypothèse : l'effet distinct d'une forte concentration d'huile sur la composition du microbiome fongique du sol a été révélé par l'analyse des coordonnées principales (PCoA), et les présentations de cartes thermiques ont confirmé à nouveau que la composition de la communauté fongique du sol traité avec 3,0 mg/mL d'huile (soit 0,375 mg d'huile par gramme de sol) au niveau du genre différait considérablement des autres traitements. Actuellement, les recherches sur les effets de l'ajout d'hydrocarbures monoterpéniques ou de monoterpènes oxygénés sur la diversité microbienne du sol et la structure de la communauté sont encore rares. Quelques études ont rapporté que l'α-pinène augmentait l'activité microbienne du sol et l'abondance relative des Methylophilaceae (un groupe de méthylotrophes, Proteobacteria) dans des conditions de faible teneur en humidité, jouant un rôle important en tant que source de carbone dans les sols plus secs [53]. De même, l'huile volatile de la plante entière d'A. villosum, contenant 15,03 % d'α-pinène (Tableau supplémentaire S1), a manifestement augmenté l'abondance relative des protéobactéries à 1,5 mg/mL et 3,0 mg/mL, ce qui suggère que l'α-pinène agit probablement comme l'une des sources de carbone pour les micro-organismes du sol.Les composés volatils produits par différents organes d'A. villosum ont eu des effets allélopathiques à des degrés divers sur L. sativa et L. perenne, étroitement liés aux constituants chimiques contenus dans les parties de la plante d'A. villosum. Bien que la composition chimique de l'huile volatile ait été confirmée, les composés volatils libérés par A. villosum à température ambiante sont inconnus, ce qui nécessite des recherches plus approfondies. De plus, l'effet synergétique entre différents composés allélochimiques mérite également d'être pris en compte. Concernant les micro-organismes du sol, pour étudier de manière exhaustive l'effet de l'huile volatile sur les micro-organismes du sol, des recherches plus approfondies sont nécessaires : prolonger la durée de traitement de l'huile volatile et identifier les variations de composition chimique de l'huile volatile dans le sol selon les jours. -
Huile essentielle pure d'Artemisia capillaris pour la fabrication de bougies et de savons, diffuseur en gros, nouvelle huile essentielle pour diffuseurs à roseaux
Conception d'un modèle de rongeur
Les animaux ont été répartis aléatoirement en cinq groupes de quinze souris chacun. Les souris du groupe témoin et du groupe modèle ont été gavées avechuile de sésamePendant 6 jours. Les souris du groupe témoin positif ont été gavées avec des comprimés de bifendate (BT, 10 mg/kg) pendant 6 jours. Les groupes expérimentaux ont été traités avec 100 mg/kg et 50 mg/kg d'huile essentielle d'ail dissoute dans de l'huile de sésame pendant 6 jours. Le 6e jour, le groupe témoin a été traité avec de l'huile de sésame, et tous les autres groupes ont reçu une dose unique de CCl4 à 0,2 % dans de l'huile de sésame (10 ml/kg) parinjection intrapéritonéaleLes souris ont ensuite été mises à jeun sans eau et des échantillons de sang ont été prélevés dans les vaisseaux rétrobulbaires ; le sang collecté a été centrifugé à 3000 ×gpendant 10 min pour séparer le sérum.Luxation cervicaleL'examen a été réalisé immédiatement après le prélèvement sanguin, et les échantillons de foie ont été rapidement prélevés. Une partie de l'échantillon de foie a été immédiatement conservée à −20 °C jusqu'à l'analyse, et une autre partie a été excisée et fixée dans une solution à 10 %.formolsolution ; les tissus restants ont été conservés à −80 °C pour analyse histopathologique (Wang et al., 2008,Hsu et al., 2009,Nie et al., 2015).
Mesure des paramètres biochimiques dans le sérum
Les lésions hépatiques ont été évaluées en estimant laactivités enzymatiquesdes taux sériques d'ALT et d'AST à l'aide des kits commerciaux correspondants, conformément à leurs instructions (Nanjing, province du Jiangsu, Chine). Les activités enzymatiques ont été exprimées en unités par litre (U/l).
Mesure de MDA, SOD, GSH et GSH-Pxdans les homogénats de foie
Les tissus hépatiques ont été homogénéisés avec du sérum physiologique froid dans un rapport de 1:9 (p/v, foie:sérum physiologique). Les homogénats ont été centrifugés (2500 ×gpendant 10 min) afin de recueillir les surnageants pour les dosages ultérieurs. Les lésions hépatiques ont été évaluées selon les dosages hépatiques des taux de MDA et de GSH, ainsi que de SOD et de GSH-P.xActivités. Toutes ces activités ont été déterminées conformément aux instructions du kit (Nanjing, province du Jiangsu, Chine). Les résultats pour le MDA et le GSH ont été exprimés en nmol par mg de protéines (nmol/mg prot), et les activités de la SOD et du GSH-Pxont été exprimés en U par mg de protéines (U/mg prot).
Analyse histopathologique
Des portions de foie fraîchement obtenues ont été fixées dans un tampon à 10 %paraformaldéhydesolution de phosphate. L'échantillon a ensuite été inclus dans de la paraffine, découpé en sections de 3 à 5 μm, colorées avechématoxylineetéosine(H&E) selon une procédure standard, et finalement analysé parmicroscopie optique(Tian et al., 2012).
Analyse statistique
Les résultats ont été exprimés sous la forme de la moyenne ± écart type (ET). Ils ont été analysés à l'aide du logiciel statistique SPSS Statistics, version 19.0. Les données ont été soumises à une analyse de variance (ANOVA,p< 0,05) suivi du test de Dunnett et du test T3 de Dunnett pour déterminer les différences statistiquement significatives entre les valeurs des différents groupes expérimentaux. Une différence significative a été considérée à un niveau dep< 0,05.
Résultats et discussion
Constituants de l'AEO
Après analyse GC/MS, il a été constaté que l'huile essentielle d'eucalyptus contenait 25 constituants élués entre 10 et 35 min, et 21 constituants représentant 84 % de l'huile essentielle ont été identifiés (Tableau 1). L'huile volatile contenuemonoterpénoïdes(80,9 %), sesquiterpénoïdes (9,5 %), hydrocarbures saturés non ramifiés (4,86 %) et acétylène divers (4,86 %). Comparé à d'autres études (Guo et al., 2004), nous avons trouvé des monoterpénoïdes abondants (80,90 %) dans l'huile essentielle d'ail. Les résultats ont montré que le constituant le plus abondant de l'huile essentielle d'ail est le β-citronellol (16,23 %). Les autres principaux composants de l'huile essentielle d'ail sont le 1,8-cinéole (13,9 %),camphre(12,59 %),linalol(11,33%), α-pinène (7,21%), β-pinène (3,99%),thymol(3,22 %), etmyrcène(2,02 %). La variation de la composition chimique peut être liée aux conditions environnementales auxquelles la plante a été exposée, telles que l'eau minérale, la lumière du soleil, le stade de développement etnutrition.
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Huile essentielle pure de Saposhnikovia divaricata pour la fabrication de bougies et de savons, diffuseur en gros, nouvelle huile essentielle pour diffuseurs à roseaux
2.1. Préparation du SDE
Les rhizomes de SD ont été achetés sous forme d'herbe séchée auprès de Hanherb Co. (Guri, Corée). La taxonomie du matériel végétal a été confirmée par le Dr Go-Ya Choi de l'Institut coréen de médecine orientale (KIOM). Un spécimen de référence (numéro 2014 SDE-6) a été déposé dans l'Herbier coréen des ressources végétales standard. Les rhizomes séchés de SD (320 g) ont été extraits deux fois avec de l'éthanol à 70 % (avec un reflux de 2 h), puis concentrés sous pression réduite. La décoction a été filtrée, lyophilisée et conservée à 4 °C. Le rendement en extrait sec à partir des matières premières brutes était de 48,13 % (p/p).
2.2. Analyse quantitative par chromatographie liquide à haute performance (HPLC)
L'analyse chromatographique a été réalisée à l'aide d'un système HPLC (Waters Co., Milford, MA, États-Unis) et d'un détecteur à barrette de photodiodes. Pour l'analyse HPLC du SDE, le prim-O- l'étalon de glucosylcimifugine a été acheté auprès de l'Institut coréen de promotion de l'industrie de la médecine traditionnelle (Gyeongsan, Corée), etsec-O-glucosylhamaudol et 4′-O-β-D-glucosyl-5-O-méthylvisamminol ont été isolés dans notre laboratoire et identifiés par des analyses spectrales, principalement par RMN et MS.
Des échantillons de SDE (0,1 mg) ont été dissous dans de l'éthanol à 70 % (10 ml). La séparation chromatographique a été réalisée avec une colonne XSelect HSS T3 C18 (4,6 × 250 mm, 5μm, Waters Co., Milford, MA, États-Unis). La phase mobile était composée d'acétonitrile (A) et d'acide acétique à 0,1 % dans l'eau (B) à un débit de 1,0 mL/min. Un programme de gradient à plusieurs étapes a été utilisé comme suit : 5 % A (0 min), 5–20 % A (0–10 min), 20 % A (10–23 min) et 20–65 % A (23–40 min). La longueur d'onde de détection a été balayée à 210–400 nm et enregistrée à 254 nm. Le volume d'injection était de 10,0μL. Des solutions standard pour la détermination de trois chromones ont été préparées à une concentration finale de 7,781 mg/mL (prim-O-glucosylcimifugine), 31,125 mg/mL (4′-O-β-D-glucosyl-5-O-méthylvisamminol) et 31,125 mg/mL (sec-O-glucosylhamaudol) dans du méthanol et conservé à 4°C.
2.3. Évaluation de l'activité anti-inflammatoireIn vitro
2.3.1. Culture cellulaire et traitement des échantillons
Les cellules RAW 264.7 ont été obtenues auprès de l'American Type Culture Collection (ATCC, Manassas, VA, États-Unis) et cultivées dans un milieu DMEM contenant 1 % d'antibiotiques et 5,5 % de FBS. Les cellules ont été incubées dans une atmosphère humidifiée contenant 5 % de CO2 à 37 °C. Pour stimuler les cellules, le milieu a été remplacé par du milieu DMEM frais et du lipopolysaccharide (LPS, Sigma-Aldrich Chemical Co., St. Louis, MO, États-Unis) à 1μg/mL a été ajouté en présence ou en l'absence de SDE (200 ou 400μg/mL) pendant 24 h supplémentaires.
2.3.2. Détermination de l'oxyde nitrique (NO), de la prostaglandine E2 (PGE2) et du facteur de nécrose tumoraleα(TNF-α) et la production d'interleukine-6 (IL-6)
Les cellules ont été traitées avec du SDE et stimulées avec du LPS pendant 24 h. La production de NO a été analysée en mesurant les nitrites à l'aide du réactif de Griess, conformément à une étude précédente [12]. Sécrétion des cytokines inflammatoires PGE2, TNF-α, et l'IL-6 a été dosée à l'aide d'un kit ELISA (systèmes R&D) conformément aux instructions du fabricant. Les effets du SDE sur la production de NO et de cytokines ont été déterminés à 540 nm ou 450 nm à l'aide d'un Wallac EnVision.™lecteur de microplaques (PerkinElmer).
2.4. Évaluation de l'activité antiarthrosiqueIn vivo
2.4.1. Animaux
Des rats mâles Sprague-Dawley (âgés de 7 semaines) ont été achetés auprès de Samtako Inc. (Osan, Corée) et hébergés dans des conditions contrôlées avec un cycle lumière/obscurité de 12 heures à°C et% d'humidité. Les rats ont reçu une alimentation et de l'eau de laboratoiread libitumToutes les procédures expérimentales ont été réalisées conformément aux directives des National Institutes of Health (NIH) et approuvées par le Comité de protection et d'utilisation des animaux de l'université de Daejeon (Daejeon, République de Corée).
2.4.2. Induction de l'arthrose par MIA chez le rat
Les animaux ont été randomisés et assignés à des groupes de traitement avant le début de l'étude (par groupe). Solution MIA (3 mg/50μUne solution saline à 0,9 % a été injectée directement dans l'espace intra-articulaire du genou droit sous anesthésie induite par un mélange de kétamine et de xylazine. Les rats ont été répartis aléatoirement en quatre groupes : (1) le groupe salin sans injection de MIA ; (2) le groupe MIA avec injection de MIA ; (3) le groupe traité par SDE (200 mg/kg) avec injection de MIA ; et (4) le groupe traité par indométacine (IM) (2 mg/kg) avec injection de MIA. Les rats ont reçu du SDE et de l'IM par voie orale une semaine avant l'injection de MIA pendant quatre semaines. La posologie de SDE et de l'IM utilisée dans cette étude était basée sur celle utilisée dans des études précédentes.10,13,14].
2.4.3. Mesures de la répartition du poids des pattes arrière
Après l'induction de l'OA, l'équilibre initial de la capacité de charge des pattes arrière a été perturbé. Un testeur d'incapacitance (Linton Instrumentation, Norfolk, Royaume-Uni) a été utilisé pour évaluer les variations de la tolérance à la charge. Les rats ont été soigneusement placés dans la chambre de mesure. La force de charge exercée par le membre postérieur a été moyennée sur une période de 3 s. Le rapport de répartition du poids a été calculé par l'équation suivante : [poids du membre postérieur droit/(poids du membre postérieur droit + poids du membre postérieur gauche)] × 100 [15].
2.4.4. Mesures des taux de cytokines sériques
Les échantillons sanguins ont été centrifugés à 1 500 g pendant 10 minutes à 4 °C ; le sérum a ensuite été prélevé et conservé à −70 °C jusqu’à son utilisation. Les taux d’IL-1β, IL-6, TNF-α, et PGE2 dans le sérum ont été mesurés à l'aide de kits ELISA de R&D Systems (Minneapolis, MN, États-Unis) conformément aux instructions du fabricant.
2.4.5. Analyse RT-PCR quantitative en temps réel
L'ARN total a été extrait du tissu articulaire du genou à l'aide du réactif TRI® (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, États-Unis), rétrotranscrit en ADNc et amplifié par PCR à l'aide d'un kit TM One Step RT PCR avec SYBR green (Applied Biosystems, Grand Island, NY, États-Unis). La PCR quantitative en temps réel a été réalisée à l'aide du système Applied Biosystems 7500 Real-Time PCR (Applied Biosystems, Grand Island, NY, États-Unis). Les séquences d'amorces et de sondes sont présentées dans le tableau.1Des aliquotes d'ADNc d'échantillon et une quantité égale d'ADNc de GAPDH ont été amplifiées avec le mélange maître TaqMan® Universal PCR contenant de l'ADN polymérase, conformément aux instructions du fabricant (Applied Biosystems, Foster, CA, États-Unis). Les conditions de PCR étaient de 2 min à 50 °C, 10 min à 94 °C, 15 s à 95 °C et 1 min à 60 °C pendant 40 cycles. La concentration du gène cible a été déterminée par la méthode comparative Ct (nombre de cycles seuil au point de croisement entre le tracé d'amplification et le seuil), conformément aux instructions du fabricant.
